jueves, 26 de mayo de 2016

ESTREPTOCOCOS CATALASA

Objetivo:


Comprobar la presencia de la enzima catalasa.


Fundamento:
Se pondrá en contacto el microorganismo problema con el peróxido de hidrógeno. Si el microorganismo tiene el enzima catalasa se formará oxígeno en estado gaseoso al reducir el peróxido de hidrógeno.
Material:
  • Portaobjetos
  • Pipeta Pasteur
  • Asa de siembra
  • Mechero
Reactivos:
  • Peróxido de hidrógeno
  • Microorganismo
Procedimiento:
  • Con un asa se toma una colonia del microorganismo de 12-24h (la colonia no se debe coger de un Agar Sangre, ya que, los hematíes contienen catalasa y se podría dar resultados erróneos.
  • Se coloca la colonia de microorganismo en un portaobjetos
  • Encima del microorganismo se añade una gota de peróxido de hidrógeno
  • Comprobar los resultados debido a la formación de burbujas (resultado positivo)
Interpretación de los resultados:
  • Catalasa - en st.pyogenes (no hay presencia de burbujas)
  • Catalasa - en st.fecalis (no hay presencia de burbujas)


FOTOOOOOS Y EXPLICAR

3 PRUEBA DE LA OXIDASA

PRUEBA DE LA OXIDASA
Esta denominación se le da de forma genérica al enzima citocromo oxidasa que participa en la transferencia de electrones en la cadena respiratoria hacia el oxígeno. La oxidasa se puede definir como el enzima que cataliza la transferencia de electrones del sustrato al oxígeno.
Los microorganismos aerobios obtienen energía por respiración y la almacenan en forma de ATP. El oxígeno es reducido a partir de un sustrato orgánico que procede de la nutrición con la intervención de un sistema de transporte de electrones denominado cadena respiratoria, produciéndose agua o peróxido de hidrógeno dependiendo de la especie microbiana.
Objetivo:
Detectar en el microorganismo estudiado el enzima citocromo oxidasa
Diferenciar enterobacterias (oxidasa -) de Pseudomonas (oxidasa +)
Diferenciar entre géneros de microorganismos: Moraxella (+) y Neisseria (+) de Acinetobacter (-)
Fundamento:
Se detecta oxidasa en los microorganismos aerobios o anaerobios facultativos. Los anaerobios estrictos carecen de ella.
Se determina a través de esta prueba la presencia o ausencia de citocromo oxidasa en el microorganismo, el cual cataliza el último paso de la transferencia de electrones desde un sustrato orgánico (azúcares, polipéptidos…) al oxígeno.
Para ello se observará el cambio de color de un indicador de pH incoloro cuando está reducido y coloreado cuando se oxida.
Entre los indicadores más utilizados se encuentra la p-fenilendiamina, que por acción del enzima citocromo oxidasa da un compuesto químico indofenol que contiene color.
Material:
·  Pipeta pasteur
·  Placa de Petri o portaobjetos
·  Asa de siembra
·  Mechero
·  Papel de filtro
Reactivos:
·  Placa de Petri con medio apropiado para el microorganismo (Ver técnica)
·  Reactivo oxidasa de Kovacs
Procedimiento:
·  Se cultiva en una placa de Petri con agar sangre el microorganismo problema. Se puede utilizar otro medio que sea más conveniente para el crecimiento del microorganismo investigado. Los medios que contengan glucosa pueden inducir a falsos resultados negativos debido a que la fermentación de la glucosa inhibe la actividad de la oxidasa
·  Sobre una placa de Petri o portaobjetos se coloca un trozo de papel de filtro sobre el que dejamos caer 2 ó 3 gotas de reactivo de Kovacs. La tira de papel de filtro impregnada con reactivo puede ser sustituido por discos comerciales ya preparados que antes de utilizarlos deben rehidratarse con unas gotas de agua destilada.
·  Se toma una colonia con el asa de siembra y se extiende en el papel.
·  El resultado se lee en 5-10 segundos.
·  Se puede realizar esta técnica de otra manera. Añadiendo directamente el reactivo oxidasa de Kovacs sobre las colonias de la placa de Petri con agar sangre. Si son oxidasa positivos toman un color marrón y enseguida pasan a negro parduzco.


Interpretación de los resultados:
·  Oxidasa +: aparece un color purpúreo en el papel. Si se desarrolla el color a los 10-60segundos se considera oxidasa retardado positivo.

·  Oxidasa -: No se produce color.


1  oxidasa neg.jpg 2 aureus epidermidis.jpg


Mediante esta imagen, apreciamos como en los dos portaobjetos no ha cambiado el color. Los dos microorganismos (S. Aureus y S. Epidermidis) son oxidasa -, y tenemos los resultados en mojado, y el color no varía en ninguno.


martes, 3 de mayo de 2016

AGAR HEKTOEN

PREPARACIÓN DE AGAR HEKTOEN


Para la preparación del Agar Hektoen, lo primero que tenemos que hacer es leer el protocolo para preparar el medio.


El protocolo nos indica que usemos por cada 1000 mL 76 gramos de agar hektoen, nosotros tan solo prepararemos 100 mL y por lo tanto para ello necesitaremos 7,6 gramos.


Después de tener los 7,6 gramos pesados con la balanza electrónica y en un vidrio reloj cojeremos y lo añadiremos en un Erlenmeyer de 100 mL y lo mezclaremos.


Despues de mezclarlo cojeremos el Erlermeyer y lo colocaremos sobre una placa calefactora para hacer que hierva el medio, le añadimos la mosca para que se mezcle mejor. Después de que el medio esté totalmente preparado y haya hervido, lo distribuiremos en placas de cultivo hasta agotar la mezcla.

Importante: al tratarse de Agar Hektoen no necesita pasar por el autoclave.